МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ УКРАИНЫ Национальный технический университет Украины Факультет биотехнологии и биотехники;

Содержание

Слайд 2

Фенилкетонурия

Одним из наиболее распространенных наследственных заболеваний является фенилкетонурия
В Украине на 8300 новорожденных

Фенилкетонурия Одним из наиболее распространенных наследственных заболеваний является фенилкетонурия В Украине на
один ребенок рождается больной ФКУ

Слайд 3

Фенилаланингидроксилаза катализирует реакцию преобразования

фенилаланин + О2 + тетрагидробиоптерин

тирозин + вода

Фенилаланингидроксилаза катализирует реакцию преобразования фенилаланин + О2 + тетрагидробиоптерин ↓ тирозин + вода + окисленный биоптерин
+ окисленный биоптерин

Слайд 4

Цель работы

Провести ДНК-анализ мутаций и полиморфизма гена ФАГ и оптимизировать технологию проведения

Цель работы Провести ДНК-анализ мутаций и полиморфизма гена ФАГ и оптимизировать технологию
полимеразной цепной реакции для амплификации in vitro последовательности ДНК седьмого экзона этого гена.

Слайд 5

Для достижения цели были поставлены основные задачи исследования:

ДНК-анализ мутаций
R408W, R158Q,

Для достижения цели были поставлены основные задачи исследования: ДНК-анализ мутаций R408W, R158Q,
Y414C, IVS10nt546, IVS12nt1 гена ФАГ
ДНК-анализ мутаций в последовательности 7-го экзона гена ФАГ
Анализ алельного полиморфизма VNTR-локуса 3`-нетранслированой области гена ФАГ

Слайд 6

Объект и предмет исследования

Объект исследования - ДНК человека полученная из лейкоцитов периферической

Объект и предмет исследования Объект исследования - ДНК человека полученная из лейкоцитов
крови
Предмет исследования – анализ мутаций в 5, 7, 12 экзоне и 10, 12 интроне гена ФАГ

Слайд 7

Методы:

Выделение и очистка ДНК;
амплификация in vitro последовательностей гена ФАГ методом полимеразной цепной

Методы: Выделение и очистка ДНК; амплификация in vitro последовательностей гена ФАГ методом
реакции;
рестрикционный анализ ПЦР-продуктов;
гель-электрофорез

Слайд 8

Этапы ДНК-анализа:

Выделение геномной ДНК из образцов венозной крови методом фенольной экстракции;
Амплификация in

Этапы ДНК-анализа: Выделение геномной ДНК из образцов венозной крови методом фенольной экстракции;
vitro фрагмента ДНК с помощью полимеразной цепной реакции;
Гидролиз ПЦР-продуктов при помощи эндонуклеаз рестрикции;
Гель-электрофорез в агарозном и полиакриламидном геле.

Слайд 9

Схема рестрикционного анализа для детекции мутаций R408W эндонуклеазой рестрикции Eco1301

Сайт узнавания Eco1301

Схема рестрикционного анализа для детекции мутаций R408W эндонуклеазой рестрикции Eco1301 Сайт узнавания
CC

-A-T-A-C-C-T-C-G-G-C-C-C

-T-A-T-G-G-A-G-C-C-G-G-G

: : : : : : : : : : : :

-A-T-A-C-C-T-T-G-G-C-C-C

-T-A-T-G-G-A-A-C-C-G-G-G

: : : : : : : : : : : :

Eco1301

-A-T-A-C C-T-T-G-G-C-C-C

-T-A-T-G-G-A-A-C C-G-G-G

: : : : : : : :

245 п. н.

148 п. н.

97 п. н.

AATT

GG

-A-T-A-C-C-T-C-G-G-C-C-C

-T-A-T-G-G-A-G-C-C-G-G-G

: : : : : : : : : : : :

Сайт узнавания Eco1301

Слайд 10

Анализ мутации R408W.

1 2 3 4

1, 2 – R408W/норма, 3 –

Анализ мутации R408W. 1 2 3 4 1, 2 – R408W/норма, 3
норма/норма,
4 – R408/R408W.

Слайд 11

: : : :

19 п. н.

Фрагмент “нормальной” последовательности

Фрагмент последовательности с мутацией

: : : : 19 п. н. Фрагмент “нормальной” последовательности Фрагмент последовательности
R158Q

-A-A-G-C

3`-T-T-C-T-G-C-C-T-T-C-5`

-T-T-C-T-G-T-C-T-T-C-

5`-A-A-G-C-3`

-T-T-C-G-G-C-C- T-T-C-

3`-T-T-C-T-G-C-C-T-T-C-5`

: : :

Схема рестрикционного анализа для детекции мутаций R158Q эндонуклеазой рестрикции MspI

5`-A-A-G-C-3`

3`-T-T-C-T-G-T-C-T-T-C-5`

: : :

: : : : : :

-C-G-G-A-A-G-

Слайд 12

Анализ мутации R158Q.

123 п.н.
119 п.н.

1 2 3 4

1, 2 - R158Q/норма;
3,

Анализ мутации R158Q. 123 п.н. 119 п.н. 1 2 3 4 1,
4 - норма/норма.

Слайд 13

На первом этапе мы рассматривали четыре паралельно протикающие реакции:

ДНК+Pr →ДНК.Pr Образование

На первом этапе мы рассматривали четыре паралельно протикающие реакции: ДНК+Pr →ДНК.Pr Образование
комплекса ДНК.Pr
ДНК.Pr →ДНК+Pr Разрушение комплекса ДНК.Pr
ДНК+Pr →ДНК*.Pr Образование комплекса ДНК*.Pr с неполной гомологией
ДНК*.Pr →ДНК+Pr Разрушение комплекса ДНК*.Pr с неполной гомологией

Слайд 14

Концентрации реагентов описываются системой диф. уравнений:

Решив данную систему мы получили:

Концентрации реагентов описываются системой диф. уравнений: Решив данную систему мы получили:

Слайд 15

График зависимости концентрации ssДНК и комплексов ДНК.Pr, ДНК.Pr* от времени

x(t) –

График зависимости концентрации ssДНК и комплексов ДНК.Pr, ДНК.Pr* от времени x(t) –
C(ssDNA)
y(t) – C(ssDNA.Pr)
z(t) – 10*C(ssDNA*.Pr)

Слайд 16

На втором этапе мы рассматривали шесть паралельно протикающие реакции:

ДНК+Pr →ДНК.Pr Образование комплекса

На втором этапе мы рассматривали шесть паралельно протикающие реакции: ДНК+Pr →ДНК.Pr Образование
ДНК.Pr
ДНК.Pr →ДНК+Pr Разрушение комплекса ДНК.Pr
ДНК+Pr →ДНК*.Pr Образование комплекса ДНК*.Pr с неполной гомологией
ДНК*.Pr →ДНК+Pr Разрушение комплекса ДНК*.Pr с неполной гомологией
ssДНК.Pr + dNTP → ДНК + H3PO4 Образование двухцепочечной спирали ДНК
ssДНК*.Pr + dNTP → ДНК* + H3PO4 Образование двухцепочечной спирали ДНК

Слайд 17

Данные процессы описываются системой диф. уравнений:

Данные процессы описываются системой диф. уравнений:

Слайд 18

Оптимальный температурный режим отжига праймеров описывается формулой T=57.88+3.11e-0.0825τ

Оптимальный температурный режим отжига праймеров описывается формулой T=57.88+3.11e-0.0825τ

Слайд 19

Зависимость концентрации ssDNA, DNA.Pr, DNA.Pr* и специфичности от времени, при температуре T=58С

Где:

Зависимость концентрации ssDNA, DNA.Pr, DNA.Pr* и специфичности от времени, при температуре T=58С
X – концентрация одноцепочечных молекул ДНК; Y - кон. комплексов ДНК.Пр; Z - кон. не специфических скомплексов ДНК.Пр; A - кон. специфического ПЦР продукта; B - кон. не специфического ПЦР продукта; S – отношение специфического ПЦР продукта к неспецифическому; S1 – отношение специфического ПЦР продукта к неспецифическому, рассчитаная при условии что специфические и не специфические комплексы превратятся в ПЦР продукт при элонгации.

Слайд 20

Зависимость концентрации ssDNA, DNA.Pr, DNA.Pr* и специфичности от времени, при изменении температуры

Зависимость концентрации ssDNA, DNA.Pr, DNA.Pr* и специфичности от времени, при изменении температуры
по формуле T=57.88+3.11e-0.0825τ

Где: X – концентрация одноцепочечных молекул ДНК; Y - кон. комплексов ДНК.Пр; Z - кон. не специфических скомплексов ДНК.Пр; A - кон. специфического ПЦР продукта; B - кон. не специфического ПЦР продукта; S – отношение специфического ПЦР продукта к неспецифическому; S1 – отношение специфического ПЦР продукта к неспецифическому, рассчитаная при условии что специфические и не специфические комплексы превратятся в ПЦР продукт при элонгации.

Слайд 21

Схема рестрикционного анализа для детекции мутаций R252W (эндонуклеаза рестрикции AvaI).

-T-C-C-T-C-T-C-G-G-G-A-T-T-

-A-G-G-A-G-A-G-C-C-C-T-A-A-

:

Схема рестрикционного анализа для детекции мутаций R252W (эндонуклеаза рестрикции AvaI). -T-C-C-T-C-T-C-G-G-G-A-T-T- -A-G-G-A-G-A-G-C-C-C-T-A-A-
: : : : : : : : : : : :

AvaI

169 п. н.

113 п. н.

56 п. н.

Сайт узнавания AvaI C CG G

Фрагмент “нормальной” последовательности

Фрагмент последовательности с мутацией R252W

CT

GA

-T-C-C-T-C-T-T-G-G-G-A-T-T-

-A-G-G-A-G-A-G-C-C-C-T-A-A-

: : : : : : : : : : : : :

-T-C-C-T-C T-C-G-G-G-A-T-T-

-A-G-G-A-G-A-G-C-C C-T-A-A-

: : : : : : : : :

Сайт узнавания AvaI

-T-C-C-T-C-T-T-G-G-G-A-T-T-

-A-G-G-A-G-A-G-C-C-C-T-A-A-

: : : : : : : : : : : : :

Слайд 22

Анализ мутаций R252W

1 - R252W/норма
2 - норма/норма
М - Маркер молекулярной массы

Анализ мутаций R252W 1 - R252W/норма 2 - норма/норма М - Маркер молекулярной массы

Слайд 23

Электрофореграмма продуктов амплификации VNTR –полиморфизма

1 2 3 4 М

1 - генотип

Электрофореграмма продуктов амплификации VNTR –полиморфизма 1 2 3 4 М 1 -
3/3 (380/380 п.н.); 2 - генотип 3/7 (380/500 п.н.);
3 - генотип 3/8 (380/530 п.н.); 4 - генотип 9/12 (560/650 п.н.);
M - Маркер молекулярной массы ДНК плазмиды pBR322 гидролизированная эндонуклеазой MspI

Слайд 24

Выводы

1. Проведен ДНК-анализ мутаций R408W, IVS12nt1, R158Q, Y414C, IVS10nt546 гена ФАГ в

Выводы 1. Проведен ДНК-анализ мутаций R408W, IVS12nt1, R158Q, Y414C, IVS10nt546 гена ФАГ
68 образцах. Двадцать три из них в дальнейщем использовались в качестве ДНК-матрици для амплификации седьмого экзона гена ФАГ.
Подобраны условия для амплификации in vitro и рестрикции последовательности седьмого екзона гена ФАГ.
3. Рассчитана математическая модель отжига праймеров и предложен оптимальный температурный режим амплификации который представлен в виде функции T=57.88+3.11e-0.0825τ.
4. Проведен анализ аллельного полиморфизма VNTR-локуса гена ФАГ с использованием специфической амплификации in vitro последовательности 3'-нетранслированного участка этого гена.
5. Проведенные иследования позволили оптимизировать анализ идентифицируемых мутаций для проведения пренатальной ДНК-диагностики фенилкетонурии с целью предупреждения рождения больных детей.
Имя файла: МИНИСТЕРСТВО-ОБРАЗОВАНИЯ-И-НАУКИ-УКРАИНЫ-Национальный-технический-университет-Украины-Факультет-биотехнологии-и-биотехники;.pptx
Количество просмотров: 130
Количество скачиваний: 0