Fiziologia_1

Проверка знаний:

Физиология и биохимия микроорганизмов
(6 лекция)

Физиология микроорганизмов
1.Классификация микроорганизмов по физиологическим особенностям
2.Понятие о чистой культуре, штамме
3.Бактериологический метод
4.Классификация питательных сред
5. Дифференциально-диагностические среды для определения видовой принадлежности микробов и изучения их свойств.

Метаболизм
В биохимическом отношении все живые существа на Земле сходны (принцип биохимического единства А.Клюйвера) – вся совокупность химических реакций в клетке (метаболизм)подчиняется этому принципу.
Катаболизм-это все реакции, приводящие к расщеплению и окислению веществ с получением энергии. Анаболизм – пути, приводящие к синтезу основных сложных веществ.
Метаболизм МО разнообразен: питательными веществами выступают различные органические и минеральные соединения.
Поступление в бактериальную клетку посредством диффузии, облегченной диффузии (белки-переносчики), активного транспорта (пермеазы).

На 80-90% клетка бактерии состоит из воды, остальное – сухое вещество, из которого 52% - белки, 17% - углеводы, 9% липиды, 16% РНК, 3% ДНК и 3% минеральные вещества.
Биогенные элементы:
C - углерод (50% доля по массе)
N - азот (14%)
H -водород
O - кислород
P - фосфор (3%)
Макроэлементы (K, Mg, Na, Ca, Fe, S, Mn) и микроэлементы (Zn, Cu, Co, Ba), ростовые вещества (прототрофы – не нуждаются в факторах роста, ауксотрофы – требуют добавления в среду культивирования факторов роста, чаще всего это витамины).
Химический состав бактериальной клетки

Автотрофы – могут синтезировать органические соединения из неорганических (из CO2 и воды), используя дополнительные источники энергии.
Гетеротрофы – используют в качестве источника энергии готовые органические вещества (питательные), живут за счет автотрофных организмов и их биосинтетических процессов.
Белки, жиры, углеводы и нуклеиновые кислоты синтезируются из мономеров с поглощением энергии. Энергия запасается бактериями в форме молекул АТФ (аденозинтрифосфорной кислоты) -универсального аккумулятора химической энергии.
Фототрофы – используют свет в качестве источника энергии.
Хемотрофы – используют энергию окислительно-восстановительных реакций.
Литотрофы – используют неорганические доноры электронов.
Органотрофы - используют органические соединения как доноры электронов.

В медицинской микробиологии изучаются гетерохемоорганотрофы:

Классификация бактерий по способу питания (пояснения к таблице)
1. По источнику углерода
Аутотрофы используют углерод неорганических соединений, чаще всего CO2
Гетеротрофы нуждаются в готовых органических соединениях. Гетеротрофы делятся на – сапрофиты (развиваются на мертвой органической материи) и – паразиты (нуждаются в живой органической материи).
2. По источнику энергии
Фототрофы – используют энергию солнечного света
Хемотрофы – используют энергию химических реакций
3. По донору электронов
Литотрофы – источник электронов – неорганические соединения
Органотрофы – источник электронов – органические вещества
Гетерохемоорганотрофы – источник углерода у них является и источником энергии.

Сапрофиты – питаются мёртвым органическим материалом.
Паразиты – зависят в получении питательных веществ от макроорганизма.
Среди паразитов различают облигатные и факультативные. Облигатные паразиты полностью лишены возможности жить вне клеток макроорганизма. К ним относятся представители родов Rickettsia, Chlamydia и др., размножающиеся только внутри клеток макроорганизма. Факультативные паразиты могут жить и без хозяина и размножаться, так же как и сапрофиты, в т.ч. на питательных средах in vitro, т.е. вне организма.

Получение энергии бактериями:
При окислительно-восстановительном процессе электроны переносятся от донора к акцептору. При этом выделяется энергия, синтезируется АТФ, а перенос электронов осуществляют дыхательные ферменты, формирующие т.называемую дыхательную цепь. Конечные продукты дыхания: углекислый газ и вода.
У бактерий выделяют 2 механизма дыхания:
Аэробный механизм дыхания: акцептором электронов является кислород.
Анаэробный механизм: акцептором электронов являются неорганические соединения (нитраты, сульфаты).

В зависимости от характера дыхания/отношения к О2 проводится классификация бактерий по типу дыхания:
Облигатные (строгие) аэробы: 21% кислорода в атмосферном воздухе.
Облигатные (строгие) анаэробы: развиваются в бескислородных условиях. Облигатными аэробами могут быть возбудители столбняка, газовой гангрены.
Факультативные анаэробы (или аэробы).
Микроаэрофилы – нуждаются в пониженном содержании кислорода – молочнокислые бактерии. Аэротолерантные - не нуждаются в кислороде, но переносят его в среде культивирования.
Капнофилы -ряд бактерий, лучше растущих в присутствии повышенных концентраций СО2. Бактероиды, фузобактерии относятся к капнофилам, так как они лучше растут в атмосфере, содержащей 3-5% СО2

Пример анаэробного микроорганизма:
Clostridium perfringens – КЛОСТРИДИУМ ПЕРФРИНГЕНС – анаэроб. Вызывает газовую гангрену.

Газовая гангрена:
При ощупывании – крепитация, т.е. типичное похрустывание, как снег в мороз.
1.Симптом лигатуры — при наложении лигатуры на участок конечности очень быстро нить начинает впиваться в кожу.
2.Симптом шпателя — при постукивании металлическим шпателем по поражённой области слышен характерный хрустящий, с тимпаническим оттенком звук.
3.Симптом пробки шампанского — при извлечении тампона из раневого хода слышен хлопок.
4. Межмышечные скопления газа на рентгеновском снимке визуализируются в виде «ёлочек».

Пример аэробного микроорганизма:
Синегнойная палчка - Pseudomonas aeruginosa.
Называется синегнойной, так как продуцирует специальный пигмент, который окрашивает питательную среду в сине-зеленый цвет

Pseudomonas aeruginosa
До 50% случаев внутрибольничных инфекций вызваны синегнойной палочкой. Этот микроорганизм нередко выделяют с дверных ручек, щеток для мытья рук, водопроводных кранов, мыла, детских весов, пеленальных столов, наркозных аппаратов, с рук медперсонала. Бактерия вызывает заболевание у ослабленных людей при массивном обсеменении организма и при нарушениях иммунитета.

Отношение микроорганизмов к молекулярному кислороду
NB!

Анаэробные и аэробные бактерии можно различить, выращивая их на жидкой питательной среде и наблюдая, какие зоны в пробирке они занимают. 1 — облигатный аэроб; 2 — облигатный анаэроб; 3 — факультативных анаэроб; 4 — микроаэрофил; 5 — аэротолерантная бактерия.

Брожение или ферментация: процесс получения энергии, при котором как донором, так и акцептором электронов служат органические вещества. Кислород участия в брожении не принимает. Продукты брожения: кислоты, газы, спирты. Соответственно им разделяют: спиртовое, молочнокислое, муравьинокислое, маслянокислое брожение.
Спиртовое брожение встречается в основном у дрожжей. Конечными продуктами являются этанол и СО2. Спиртовое брожение используется в хлебопекарной промышленности и виноделии.
Молочнокислое брожение происходит у S. pyogenes, E. faecalis, S. Salivarius, а также у бактерий родов Lactobacillus и Bifidobacterium. Продуктами этого типа брожения являются молочная кислота, этанол и уксусная кислота. Продукты молочнокислого брожения играют большую роль в формировании колонизационной резистентности бактериями рода Lactobacillus и Bifidobacterium, составляющих облигатную флору кишечника. Молочнокислые бактерии широко используются в молочной промышленности для получения молочнокислых продуктов, а также в создании пробиотиков.
Муравьинокислое (смешанное) брожение встречается у представителей семейств Enterobacteriaceae и Vibrionaceae. Различают два типа этого брожения. При первом происходит расщепление пирувата с образованием через цепь реакций муравьиной, янтарной и молочной кислот. Сильное кислотообразование можно выявить реакцией с индикатором метиленовым красным, который меняет окраску в сильнокислой среде. При втором типе брожения образуется целый ряд кислот, однако главным продуктом брожения являются ацетоин и 2,3-бутандиол, образующиеся через цепь реакций из двух молекул пирувата. Эти вещества при взаимодействии с α-нафтолом в щелочной среде вызывают образование окраски бурого цвета, что выявляется реакцией Фогеса-Проскауэра, используемой при идентификации бактерий.
Маслянокислое брожение. Масляная кислота, бутанол, ацетон, изопропанол и ряд других органических кислот, в частности уксусная, капроновая, валериановая, пальмитиновая, являются продуктами сбраживания углеводов сахаролитическими строгими анаэробами. Спектр этих кислот, определяемый при помощи газожидкостной хроматографии, используется как экспресс-метод при идентификации анаэробов.
Ферментация белков. Если для бактерий с бродильным метаболизмом источником энергии служат белки, то такие бактерии называются пептолитическими. Пептолитическими являются некоторые клостридии, в частности С. histolyticum и C. botulinum. Пептолитические бактерии гидролизуют белки и сбраживают аминокислоты. Многие аминокислоты сбраживаются совместно с другими, при этом одна выполняет функцию донора, а другая - функцию акцептора водорода. Аминокислота-донор дезаминируется в кетокислоту, которая в результате окислительного декарбоксилирования превращается в жирную кислоту.

Питательные среды: история

В 1883 году Р. Кох разработал метод выделения чистых культур микробов путем посева на пластинки желатина.
Другой состав плотной питательной среды, который используется до сих пор, предложил в 1884 году немецкий микробиолог В. Хессе. Основным компонентом этой среды был агар-агар, который его жена использовала для приготовления фруктового желе.
Осталось только найти форму, в которую удобно заливать плотные питательные среды, и наблюдать за ростом микробов. Такая форма в виде донышка, отрезанного от лабораторной бутыли, была предложена в 1887 году Ю. Петри и получила название - чашка Петри. Эти открытия положили основу для разработки, а затем промышленного выпуска и широкого практического использования жидких, полужидких и плотных питательных сред. Эти среды и чашки Петри до сих пор являются неотъемлемым атрибутом каждой микробиологической лаборатории.
В 1905 году бактериолог А. Мак-Конки разработал первую хромогенную (от chroma (chromatos) - цвет и genes – порождающий) среду. Принцип действия хромогенных питательных сред заключается в образовании окрашенных веществ (индикаторов) в результате взаимодействия высокоспецифичных ферментов бактерий с компонентами среды.

Питательные среды для выращивания бактерий
Источниками биогенов, других элементов, ростовых и питательных веществ служат :
Мясо
Рыба, рыбная мука
Овощи (картофель)
Дрожжи
Молоко
Яйца
Кровь
Химические соединения
Из них готовят настои и экстракты (мясная вода, дрожжевой экстракт) – источники факторов роста, ферментативные и кислотные гидролизаты (пептон, перевар Хоттингера, перевар казеина и т.п.) – источники аминокислот и жр.органических питательных веществ.

Приготовление питательной смеси в лаборатории:

Среды:
по составу:
натуральные (см.выше – имеют неопределенный химический состав),
полусинтетические и
синтетические(содержат только химически чистые соединения в установленных дозировках).
По плотности: жидкие, полужидкие (0,2-0,7% агара) и плотные (1,5-2% агара).
Агар-агар – полисахарид, получаемый из морских водорослей. Образует в воде гель, плавящийся при 80-86⁰ С. И застудневающий при 40-45 ⁰ С. Он не расщепляется большинством МО.
По свойствам и назначению: простые (основные, универсальные)*, сложные и специальные (на основе простых, предназначены для избирательного культивирования определенных видов МО, изучения их свойств).
* - мясопептонный бульон, мясопептонный агар, бульон Хоттингера и др.
После приготовления среды стерилизуют. Некоторые среды (Эндо, Плоскирева, Левина) не требуют стерилизации.
ВАЖНО!

Агар-агар
Пищевая добавка
E406

Питательные среды предназначены для накопления, выделения и изучения, а также сохранения микроорганизмов.
Для обеспечения различных типов метаболизма питательные среды:
Должны содержать все элементы, из которых строится клетка, в легкоусвояемой форме для конкретного микроорганизма.
Питательная среда должна иметь достаточную влажность (не менее 20%)
Концентрация солей в среде – изотоническая (от 0,5% - для большинства микроорганизмов и максимально для галофильных – 3%).
Концентрация водородных ионов (рН среды) – оптимальна для выращиваемого микроорганизма (в диапазоне от 4,5 до 8,5)
Окислительно-восстановительный потенциал среды (Еh) – для анаэробов – 0,120-0,060 В, для аэробов – более 0,080 В.
Питательная среда должна быть стерильной.

Виды специальных сред
Элективные (избирательные) – содержат компоненты положительной (оптимальные условия для нужного МО) или отрицательной (угнетает другие виды МО)селекции.
Дифференциально-диагностические (содержат субстрат, к которому определяется отношение МО, и индикатор)
Консервирующие

Культивирование микроорганизмов в лабораторных условиях
1 этап выделения чистых культур:
Микроскопия (ориентировочная)
Подготовка материала к исследованию
Посев на среды обогащения
Посев на плотные питательные среды (получение колоний)
Колония – это популяция микробных клеток одного вида, сформировавшаяся в результате деления одной микробной клетки в условиях культивирования на плотной питательной среде.

Выделение и идентификация чистых культур
2 этап (изолированные колонии)
Макроскопическое изучение колоний в проходящем свете (величина, форма, цвет, прозрачность, положение, поверхность, консистенция, структура, края)
Микроскопия колоний под малым увеличением микроскопа и в окрашенном мазке
Проба на аэротолерантность
Посев на скошенный питательный агар – выделение чистой культуры

Выделение и идентификация чистых культур
3 этап (чистая культура) Идентификация выделенной культуры по комплексу биологических свойств:
Морфология и тинкториальные свойства,
Культуральные свойства
Биохимические свойства
Серологические свойства
Патогенность для животных
Фаголизабельность
Чувствительность к антибиотикам
Следствием этого этапа является заключение о выделенной культуре.

Иногда при необходимости разделения микроорганизмов к среде культивирования добавляют компоненты, избирательно подавляющие рост тех или иных микроорганизмов. Например, введение нистатина для очищения от сопутствующих грибов. Введение селенита натрия стимулирует рост сальмонелл, ингибируя рост кишечной палочки.
Некоторые подвижные бактерии могут быстро распространяться по поверхности влажной питательной среды, благодаря чему их можно очистить от неподвижных видов бактерий (P. vulgaris, С. tetani).
Прогревание: при выделении чистой культуры спорообразующего вида бактерий исследуемый материал прогревают при 80 °С 20 мин или кратковременно кипятят. Вегетативные клетки сопутствующей микрофлоры в этих условиях погибают, а споры искомого микроорганизма сохраняют жизнеспособность и прорастают после посева на питательные среды.
Способность микроорганизма расти при низких (листерии) или высоких (термофильные бактерии) температурах, которые лежат за пределами температурных диапазонов сопутствующих видов бактерий.

Выделение чистых культур микроорганизмов. При бактериологическом исследовании искомый микроорганизм обнаруживают в материале, как правило, в смеси с бактериями других видов. Классическими методами бактериологии возможно идентифицировать микроорганизм только при условии, что он находится в виде чистой культуры.
Методы, основанные на механическом разобщении клеток. Эти методы наиболее часто применяют при выделении чистых культур микроорганизмов.
Метод Пастера (метод разведений): из исследуемого материала готовят ряд последовательных, чаще десятикратных разведений на стерильной жидкой питательной среде в пробирках или колбах (10-1…10-10). Предполагают, что количество микробных клеток в каждом последующем разведении будет меньше, чем в предыдущем, и в какой-то из пробирок останется только одна микробная клетка, которая и даст начало чистой культуре микроорганизма. Однако для успешного применения этого метода необходимо, чтобы искомый микроорганизм в материале количественно преобладал над сопутствующими видами.
Метод Коха (метод заливок): исследуемый материал в небольшом количестве вносят в пробирку с расплавленным и охлажденным до 45-50 °С МПА, перемешивают, затем каплю питательной среды переносят во вторую пробирку с расплавленным МПА и т. д. Количество разведений зависит от предполагаемой численности микроорганизмов в исследуемом материале. Затем содержимое каждой пробирки выливают в стерильные чашки Петри, после затвердения среды посевы помещают в термостат. Фиксированные в плотной среде микробные клетки при размножении формируют колонии, из которых можно отвить чистую культуру микроорганизма.

Метод Дригальского: берут три-пять чашек Петри с плотной питательной средой. В одну из чашек вносят посевной материал и распределяют его шпателем по поверхности питательной среды. Не обжигая шпатель, оставшийся на нем материал последовательно растирают на поверхности среды во второй, третьей и остальных чашках. В последних чашках Петри после инкубирования в термостате обычно наблюдают формирование изолированных колоний бактерий.
Метод истощающего штриха: Бактериологической петлей с посевным материалом несколько раз делают параллельные штрихи в одном секторе чашки Петри с питательным агаром. Петлю прожигают в пламени горелки, дают остыть и часть материала из первого сектора (А) аналогичным образом распределяют во втором секторе (В), затем в третьем (С) и четвертом (Д) секторах. При рассеве бактериальной массы из колоний в секторе Д при таком способе получают рост изолированных колоний.

Изучение изолированных колоний и отвивка (пересев) чистых культур МО
Колония — макроскопически видимое скопление клеток мик­роорганизма на поверхности или внутри плотной питательной среды, образовавшихся в результате размножения одной жизнеспособной клетки. По этой причине колонию обычно рассматривают как чистую культуру микроорганизма.
Строение колоний – важный культуральный признак при определении вида микроорганизма.
Отмечают величину колоний, форму, прозрачность - в проходящем свете, т.е. со дна чашки Петри.
Определяют цвет, характер поверхности, расположение колоний на пит.среде (выпуклое, плоское, вдавленное) – в отраженном свете, т.е. со стороны крышки чашки Петри.
Под микроскопом на малом увеличении (исследуют чашки дном вверх) – характер краёв колонии, структуру.
Анализируя морфологическую форму колоний важно определить тип колонии: s-тип колонии гладкие или r-тип колонии шероховатые или m-тип колонии слизистые.

Биохимическая идентификация бактерий
Способность бактерий расщеплять белки (протеолитические ферменты МО) – на средах с желатином (разжижжение среды), молоком(просветление), сывороткой и пептоном (образование индола, сероводорода, аммиака и др).
Способность бактерий разлагать сахара и многоатомные спирты с образованием кислоты – на средах Гиса, содержащих углевод(какой-либо конкретный моносахарид или полисахароид) и индикатор. Это так называемый «пёстрый ряд». Оценивается газообразование (пузырьки в полужидкой среде или в поплавке в жидких средах).
Эндо, Левина и Плоскирева (содержат лактозу) – изучение сахаролитических свойств МО. Цвет колоний изменяется соответственно индикатору (под действием образования кислоты при разложении молочного сахара).

Ферменты бактерий
Ферменты – биологические катализаторы, ускоряющие течение метаболических реакций.
Эндоферменты - работают внутри бактериальной клетки, составляют мультиферментные комплексы, обеспечивающие процессы жизнедеятельности бактериальной клетки. Конститутивные ферменты (ферменты гликолиза) постоянно синтезируются в бактериальной клетке. Индуцибельные ферменты находятся в клетке в следовых концентрациях, а при наличии субстрата синтезируются в необходимом количестве (ферменты транспорта и катаболизма лактозы).
Экзоферменты - расщепляют крупные молекулы пептидов, полисахаридов и липидов до мономеров, способных проникнуть внутрь клетки. Экзоферменты часто являются маркёром таксономической принадлежности микроорганизма. Их выявляют с помощью дифференциально-диагностических сред.

Отличия по набору ферментов:
Микроорганизмы синтезируют разнообразные ферменты, принадлежащие к шести различным классам, что определяется геномом микроба и является стабильным признаком, применяемым при их идентификации.
Плазмокоагулаза (пробирочный тест с по скорости свертывания испытуемым МО цитратной плазмы крови)
Гемотоксин (посев на кровяной агар, зоны просветления или лизиса вокруг колоний свидетельствуют о его наличия у данного МО)
Лецитиназа (действует на лецитовителлин яичного желтка, выявляется при посеве на среду ЖСА (желточно-солевой агар) – вокруг колоний образуется зона помутнения с радужным венчиком.
Гиалуронидаза (расщепляет гиалуроновую кислоту – добавление ГК к пробирке с тестируемым МО и после 30минутной экспозиции добавляется уксусная кислота – сгусток НЕ образуется, а в контрольном образце без МО и с Мо, заведомо не имеющими гиалуронидазы – формируется сгусток)
Фибринолизин – растворяет фибрин плазмы крови, добавленной к питательной среде.
Коллагеназа

Определение ферментного спектра микроорганизмов как этап идентификации.
В пределах семейства у представителей разных родов можно обнаружить как общие для семейства, так и специфические для родов наборы ферментов. У микроорганизмов разных видов в пределах одного рода есть общие (родовые) и специфические для отдельных видов ферменты. Таким образом, каждый вид микроорганизмов характеризуется специфическим набором ферментов.
О наличии того или иного фермента судят по способности микроорганизмов воздействовать на известный субстрат. Присутствие фермента регистрируют по изменению физического состояния субстрата (разжижение желатины), закислению питательной среды (среды Гисса с углеводами), образованию определенных продуктов метаболизма (индол, сероводород, аммиак) и т.д.

Выявление сахаролитической активности микроорганизмов.
В состав дифференциально-диагностических углеводных сред (среды Гисса — см. выше) входят различные соединения, которые можно назвать сахарами: моносахариды, полисахариды, многоатомные спирты. При утилизации углеводов в качестве конечных продуктов образуются кислоты и газообразные продукты. Соответственно расщепление углевода регистрируют по изменению рН среды и выделению газообразных продуктов. Закисление питательной среды улавливают при помощи различных индикаторов.
Индикатор BP (смесь водного голубого и аурина (розоловой кислоты)), входящий в состав сухих сред Гисса, меняет цвет от розового в щелочной среде через серый при нейтральном рН до голубого или ярко-синего в кислой среде.

Индикатор Андрэдэ (кислый фуксин —0,5 г, 1%-й раствор гидроксида натрия — 16 мл, дистиллированная вода — 84 мл) при закислении дает покраснение среды. Образование к-ты регистрируют по изменению цвета среды (соответственно в розовый и желтый), образование газа -по накоплению его в поплавках. Начальный и при отсутствии ферментации цвет среды- соломенно-желтый.
В жидких средах Гисса образование газов при утилизации субстрата улавливают при помощи поплавков («газовок») — стеклянных трубочек, запаянных в верхнем конце и помещенных в пробирки. В «газовках» скапливаются газы, вытесняющие жидкую питательную среду; в полужидких средах Гисса газообразные продукты остаются в толще среды в виде пузырьков.
Среда Гисса в пробирках с «поплавками» для изучения сахаролитических свойств бактерий: до посева (1), ферментация углевода с образованием кислоты 2 (изменение цвета индикатора), образованием кислоты и газа 3 (изменение цвета индикатора и накопление газа в «поплавке»)
1 2 3

Рис. 1—6. Различные формы расщепления желатины. Рис. 7 — 9. Жидкая среда с углеводом и индикатором Андраде: рис. 7 — отсутствие ферментации; рис. 8 — ферментация с образованием кислоты; рис. 9 — ферментация с образованием кислоты и газа. Рис. 10 — 12. Полужидкая среда с углеводом и индикатором BP (из сухой питательной среды): рис. 10 — отсутствие ферментации; рис. 11 — ферментация с образованием кислоты; рис. 12 — ферментация с образованием кислоты и газа. Рис. 13—15. Искусственная лакмусовая сыворотка по Зейтцу: рис. 13 — отсутствие ферментации; рис. 14 — ферментация с образованием кислоты; рис. 15 — ферментация с образованием щелочи. Рис. 16 и 17. Молоко с метиленовым синим: рис. 16 — отсутствие редукции; рис. 17 —редукция. Рис. 18 и 19. Среда Симонса: рис. 18 —отсутствие ассимиляции цитрата; рис. 19 — ассимиляция цитрата. Рис. 20 — 24. Лакмусовое молоко: рис. 20 — отсутствие ферментации; рис. 21 — ферментация с образованием кислоты; рис. 22 — ферментация с образованием щелочи; рис. 23 — пептонизация; рис. 24 — редукция. Рис. 25. Разжижение свернутой сыворотки(в проходящем свете). Рис. 26. Гемолиз на кровяном агаре (в проходящем свете). Рис. 27. Кровяная среда с теллуритом калия.
Дифференциально-диагностические среды

Тест-системы для быстрой идентификации бактерий
Тест-системы для быстрой идентификации бактерий по группе специально отобранных биохимических признаков обычно представляют собой пластмассовые пластины с лунками (микропробирками), заполненными различными сухими средами (субстратами). В эти среды вносят суспензию исследуемой культуры и после инкубирования учитывают результат. К тест-системам прилагают таблицы для учета результатов и идентификации микроорганизмов в зависимости от спектра выявленных ферментов.
За рубежом разработаны тест-системы для идентификации энтеробактерий, анаэробов и т. д. В России Нижегородский институт микробиологии и эпидемиологии выпускает тест-систему подобного типа — планшеты для идентификации энтеробактерий (ПБДЭ), кроме того, разработаны тест-системы для санитарно-микробиологических целей.

Глоссарий:
Внести в глоссарий варианты отношения микроорганизмов к кислороду (5 видов).
Внести в глоссарий классификацию питательных сред: а) по консистенции, б) по составу, в) по назначению.
Указать 3 этапа культивирования микроорганизмов в лабораторных условиях (указать для каждого, из чего состоят).
Выделение чистых культур методами, основанными на механическом разобщении клеток (указать основные).

РЕБУС
1. Загуститель, высокомолекулярный полисахарид, который содержится в некоторых морских водорослях.
2. Направленное движение бактерий
3. Возможный, необязательный. Термин применяется для описания организмов, не ограничивающихся каким-либо одним способом существования.
Воспользуемся для разгадывания ребуса первыми буквами загаданных слов.