Идентификация бактерий по морфологическим, культуральным вам. выделение и идентификация чистой культуры

Цель: научиться идентифицировать микроорганизмы с целью определения их видовой принадлежности.
Задачи:
Личностные УУД:
Понимать сущность и социальную значимость своей будущей профессии, проявлять к ней устойчивый интерес.
Организовывать собственную деятельность, выбирать типовые методы и способы выполнения профессиональных задач, оценивать их эффективность и качество.
Принимать решения в стандартных и нестандартных ситуациях, нести за них ответственность.
Осуществлять поиск, и использование информации, необходимой для эффективного выполнения профессиональных задач, профессионального и личностного развития.
Использовать информационно-коммуникационные технологии в профессиональной деятельности.

Коммуникативные УУД:
Работать в коллективе и команде, эффективно общаться с коллегами, руководством, потребителями.
Регулятивные УУД:
Целеполагание;
Планирование;
Прогнозирование;
Контроль;
Коррекция;
Оценка;
Волевая саморегуляция.
Воспитательные УУД:
Воспитание в студентах ответственность за свою жизнь и жизнь окружающих;
Профилактика вредных привычек и правонарушений.

ЛАБОРАТОРНАЯ РАБОТА «ИДЕНТИФИКАЦИЯ
МИКРООРГАНИЗМОВ»
Цель работы: знакомство с основными принципами определения микроорганизмов. В процессе выполнения лабораторной работы каждый студент изучает свойства бактерий, необходимые для описания бактериального штамма и идентификации его до уровня рода.
Время выполнения работы – 12 часов.
Задания
1. Определить чистоту идентифицируемой бактерии и изучить морфологию ее клеток.
2. Описать культуральные свойства.
3. Заполнить таблицу и подвести итоги.

Ход работы:
Пересев колоний:
Стерилизуем петлю.
Соприкасаемся со изотированной колонии.
Зигзагообразными движениями помещаем в скошенный агар.
Петлю стерелизуем.
Микроскопируем культуру с использованием препаратов «раздавленная капля» и препарата фиксированных, окрашенных фуксином клеток.
Выделение и идентификация чистой культуры бактерий:
Стерилизация петли
Берем в руку одномоментно 2 пробирки со средой Гиса и посев бактерий.
Петлей берем посев бактерий и вносим петлю в пробирку с рядом Гиса и делаем прокол до дна.
Петлю стерилизуют.
Аналогично делаем так же со всем рядом Гиса.
5. Затем эти пробирки мы помещаем в термостат при 300 на 24 часа, предварительно подписав.
2 день:
Микроскопируют культуру с использованием препаратов «раздавленная капля» и препарата фиксированных, окрашенных фуксином клеток. Результаты вносят в таблицу, составленную по форме таблицы 2.

• профиль – плоский, выпуклый, кратерообразный, конусовидный и т. д. (рисунок 1);
• форму – округлая, амебовидная, неправильная, ризоидная и т. д. (рисунок 2);
• размер (диаметр) – измеряют в миллиметрах; если размеры колонии не превышают 1 мм, то их называют точечными;
• поверхность – гладкая, шероховатая, бороздчатая, складчатая, морщинистая, с концентрическими кругами или радиально исчерченная;
• блеск и прозрачность – колония блестящая, матовая, тусклая, мучнистая, прозрачная;
• цвет – бесцветная (грязно-белые колонии относят к бесцветным) или пигментированная – белая, желтая, золотистая, оранже-
вая, сиреневая, красная, черная и т. д.; особо отмечают выделение в
субстрат пигмента; при описании колоний актиномицетов отмечают пигментацию воздушного и субстратного мицелия, а также выделение пигментов в среду;
• край – ровный, волнистый, зубчатый, бахромчатый и т. д. (рисунок 3);
• структуру – однородная, мелко - или крупнозернистая, струйчатая и т. д. (рисунок 4); край и структуру колонии определяют с помощью лупы или при малом увеличении микроскопа. Для этого чашку Петри помещают на столик микроскопа крышкой вниз;
• консистенцию определяют, прикасаясь к поверхности колонии петлей. Колония может легко сниматься с агара, быть плотной, мягкой или врастающей в агар, слизистой (прилипает к петле), тягучей, иметь вид пленки (снимается целиком), быть хрупкой (легко ломается при прикосновении петлей).
1 – изогнутый; 2 – кратерообразный; 3 – бугристый;
4 – врастающий в субстрат; 5 – плоский; 6 – выпуклый;
7 – каплевидный; 8 – конусовидный
Рисунок 1 – Профиль колонии

Размеры и многие другие особенности колонии могут изменяться с возрастом и зависят от состава среды. Поэтому при их описании указывают возраст культуры, состав среды и температуру культивирования.
1 – круглая; 2 – круглая с фестончатым краем; 3 – круглая с валиком по краю; 4, 5 – ризоидные; 6 – с ризоидным краем; 7 – амебовидная;
8 – нитевидная; 9 – складчатая; 10 – неправильная;
11 – концентрическая; 12– сложная
Рисунок 2 – Форма колонии
/ – гладкий; 2 – волнистый; 3 – зубчатый; 4 – лопастной; 5 – неправильный; 6 – реснитчатый; 7 – нитчатый; 8 – ворсинчатый; 9 – ветвистый
Рисунок 3 – Край колонии
1 – однородная; 2 – мелкозернистая; 3 – крупнозернистая;
4 – струйчатая; 5 – волокнистая
Рисунок 4 – Структура колонии

Таблица 1 – Минимальный перечень данных, необходимых для
описания новых штаммов бактерий (по H. Truper, K. Schleifer, 1992)

Таблица 2 – Свойства идентифицируемой бактерии

Результаты исследований

Домашнее задание для практического занятия № 6: «Дифференциация микроорганизмов по морфологическим свойствам: нормальная микрофлора тела человека»:
Знать лекцию.
Взять простые и цветные карандаши.
Ответить на вопросы:
1. Понятие «биоценоз». Понятие «факультативные и облигатные микроорганизмы».
2. Формирование микрофлоры человека, возрастные особенности.
3. Различные виды симбиотических взаимоотношений.
4. Микрофлора кожи и слизистых оболочек.
5. Микрофлора желудочно-кишечного тракта.
6. Микрофлора мочеполовой системы.
7. Значение нормальной микрофлоры.
8. Понятие «дисбактериоз». Условия его развития и профилактика.

4.