Слайд 2Полимеразная цепная реакция (ПЦР)
Метод, позволяющий избирательно синтезировать большие количества определённых фрагментов ДНК.
Разработан

Кэри Муллисом в 1983 году (Нобелевская премия 1993 года)
“Полимеразная” – используется фермент ДНК-полимераза
“Цепная” – состоит из повторяющихся циклов, количество ДНК с каждым циклом увеличивается в геометрической прогрессии
Слайд 3Виды ПЦР
1. В зависимости от измерения количества ПЦР-продукта:
качественная
количественная
2. Тип детекции ПЦР-продукта:
электрофоретическая
флюориметрическая
3.

Этап детекции:
в конечной точке
в реальном времени
Слайд 4Применение ПЦР
I. Получение информации
генотипирование
ДНК-диагностика
анализ уровня транскрипции
II. Получение материала (накопление)
клонирование
мутагенез
секвенирование

Слайд 6Состав реакционной смеси ПЦР
VРС = 10-50 мкл
ДНК 1-20 пг/мкл (плазмиды, фаги) или

2-20 нг/мкл (геном)
дНТФ 0,2 мМ
праймеры 0,2-1 мкМ
полимераза 0,01-0,05 е.а./мкл
Слайд 8Наиболее применяемые ДНК-полимеразы

Слайд 9Денатурация (denaturation)
Необходима для разрушения водородных связей между комплементарными цепями ДНК (плавление ДНК)
1.

Температура (Td): определяется свойствами полимеразы, обычно составляет 95ºC. Для более термоустойчивых полимераз (Pwo) температура может быть увеличена.
2. Время: для крупных молекул (геномы) увеличивается, для малых (ампликоны) – уменьшается; время нужно также увеличивать в случае GC%>50%.
Слайд 10Отжиг (annealing)
На этом этапе происходит понижение температуры, и праймеры могут присоединиться к

комплементарным участкам на матрице ДНК
Температура (Ta): зависит от состава праймеров, который определяет температуру плавления (melting) комплекса праймер–матрица (Ta = Tm - 5ºC).
Слайд 11Критерии подбора праймеров
1. GC-состав должен быть в пределах 40-60%. При этом G/C

должны быть распределены равномерно (не образовывать кластеров).
2. Температура плавления у прямого и обратного праймера должна отличаться не более, чем на 5ºC.
3. Должны отсутствовать самокомплементарные участки как внутри праймера (иначе могут образовываться шпильки), так и между праймерами (иначе образуются димеры праймеров).
4. Лучше, если на 3'-конце праймеров будут G/C (связь сильнее), но не более 3х (чтобы не было отжига на неспецифические участки).
Слайд 12Температура плавления праймеров
Tm=4*[n(G)+n(C)]+2*[n(A)+n(T)]
где n(X) - количество нуклеотида X в праймере
![Температура плавления праймеров Tm=4*[n(G)+n(C)]+2*[n(A)+n(T)] где n(X) - количество нуклеотида X в праймере](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/958332/slide-11.jpg)
Слайд 13Элонгация
На этапе элонгации происходит синтез цепей ДНК с помощью ДНК-полимеразы.
1. Температура: определяется

свойствами используемой ДНК-полимеразы и лежит в области оптимума для этого фермента (для Taq – 72ºC).
2. Время: рассчитывают по одной минуте на каждую т.п.н. ампликона (для небольших молекул обычно берут 0,5 мин.).
Слайд 14Онлайн-ресурсы для подбора условий ПЦР
Хранилище нуклеотидных последовательностей генов:
National Center for Bioinformatics (ncbi.nlm.nih.gov/gene)
Подбор

праймеров:
Primer3 (bioinfo.ut.ee/primer3/)
Primer-BLAST (ncbi.nlm.nih.gov/tools/primer-blast/)
Проведение расчётов (концентрации, операции с нуклеотидными последовательностями) и мн. др.:
MOLBIOL (molbiol.ru/scripts)
Слайд 15Домашнее задание №1: подбор праймеров.
1. Найти на NCBI в базе данных Gene

запись о каком-нибудь гене, открыть её.
Слайд 162. Открыть последовательность гена в формате FASTA.

Слайд 173. В последовательности выбрать первые 1000 нуклеотидов и сохранить в текстовый файл.

Слайд 184. “Наивный” подбор праймеров: с помощью сайта Molbiol составить праймеры (по 20

нуклеотидов) (прямой праймер совпадает с началом последовательности, обратный – комплементарен перевёрнутому концу последовательности)
Слайд 195. Подбор “оптимальных” праймеров: скопировать последовательность и вставить в окошко на сайте

Primer3; установить длину амплифицируемого фрагмента 900-1000, нажать Pick primers.
Слайд 206. Выписать в файл с исходной последовательностью наиболее оптимальные праймеры (прямой и

обратный), их температуры плавления и последовательность ПЦР-продукта (указать его длину).
Слайд 217. Проверка качества “наивных” праймеров: вставить последовательности “своих” праймеров и нажать Pick

primers; в файле указать характеристики праймеров и причины, по которым они не подходят (указаны в отчёте программы).