Содержание
- 2. Біосенсором, як правило, можна визначати лише один тип речовин, тоді як будь-який зразок може містити їхню
- 3. В літературі описано мультибіосенсори на основі напівпровідникових структур для одночасного визначення концентрацій глюкози і сечовини у
- 4. Зовнішній вигляд мультиперетворювачів виробництва Інституту хемо- і біосенсорики м. Мюнстер, Німеччина.
- 5. Кремнієва лінійка з 6-елементним масивом р-канальних іоноселективних польових транзисторів, виготовлених в Інституті фізики напівпровідників
- 6. Зовнішній вигляд приладу для роботи з мультисенсором на основі лінійки рН-ПТ.
- 7. Зовнішній вигляд та схематичне зображення амперометричних мультиперетворювачів, розроблених в Інституті молекулярної біології і генетики та Інституті
- 8. Для підключення мультисенсору до установки було розроблено та виготовлено контактний пристрій, який мав у своєму складі
- 9. Зовнішній вигляд портативної системи для роботи з амперометричними мультибіосенсорами
- 10. Дослідження специфічності окремих сенсорів та взаємодії різних субстратів між собою Типовий вигляд відгуків кондуктометричного уреазного біосенсора
- 11. Залежність відгуку кондуктометричного (a) і потенціометричного (б) уреазного сенсорів від концентрації сечовини (1) і еквімолярної суміші
- 12. Залежність відгуку потенціометричних біосенсорів на основі ацетилхолінестерази (а) і бутирилхолінестерази (б) від концентрації субстратів (1 –
- 13. Ферментативні реакції, що лежать в основі роботи кондуктометричних мультибіосенсорів для визначення сахаридів 8
- 14. Випробування роботи біоселективних елементів для визначення сахарози, мальтози, лактози та глюкози в режимі одночасного визначення сахаридів
- 15. Мультисенсори на основі ферментного інгібіторного аналізу
- 16. Калібрувальні криві інгібування різних ферментів (1-уреаза, 2-АцХЕ, 3-БуХЕ) фосфорорганічним пестицидом трихлорфоном. Час інгібування – 20 хв.
- 17. Відгуки мультибіосенсора на основі ІСПТ на додавання суміші субстратів до та після інгібування ферментів іонами ртуті
- 18. Ступінь інігібування ферментів різними токсинами, % Примітка Вміст токсинів у сумішах: Суміш № 1 10 мкМ
- 19. Для кількісного визначення суміші токсичних речовин у досліджуваній пробі користувалися дискримінантним функціональним аналізом. У цьому випадку
- 20. Нормалізація даних таблиці за допомогою дискримінантних функцій
- 21. Найбільш точне кількісне визначення складу суміші отримується за допомогою самонавчального методу штучних нейронних мереж. У цьому
- 22. Узагальнена схема визначення токсичних речовин за допомогою мультибіосенсора на основі ферментного інгібіторного аналізу
- 23. Використання мікроорганізмів може призвести до вирішення частини проблем. Всі ферменти, що використовуються, повинні функціонувати одночасно в
- 24. Використання мікроорганізмів як природних мультиферментних систем Електрохімічні біосенсори на основі зелених мікроводоростей Chlorella vulgaris
- 25. Мікроводорості Chlorella vulgaris можна розглядати як природні мультиферментні системи, за допомогою яких після їхньої оптимізації можна
- 26. Принцип роботи біосенсора на основі зелених мікроводоростей Chlorella vulgaris базується на такій ферментативній реакції: фосфатаза субстрат
- 27. Вимірювання лужної фосфатазної активності проводили в Tris-HCl буфері, pH 8,5 з 1 мM MgCl2. Концентрація, субстрату
- 28. Порівняння pNPP і MUP як субстратів для застосування в біосенсорах для вимірювання лужної фосфатазної активності.
- 29. Калібрувальні криві для визначення pNPP, отримані за допомогою кондуктометричного біосенсора з БСА (1) і кальцій-альгінатною (2)
- 30. Як показано на Рис., сигнал біосенсора на основі кальцій-альгінатної мембрани зменшується при високих концентраціях pNPP (>0.3
- 31. Залежність відгуку кондуктометричного біосенсора на додавання 40 мМ pNPP від часу експонування в парах глутарового альдегіду
- 32. Стабільність кондуктометричного біосенсора на основі зелених водоростей Chlorella vulgaris.
- 33. Відносне значення лужної фосфатазної активності, визначеної за допомогою кондуктометричного біосенсора (1) і флуоресцентної біосистеми (2) негайно
- 34. В обох випадках для малих концентрацій кадмію ( 1 години) іншими авторами, які пояснюють її клітинним
- 35. Порівняння інгібування лужної фосфатазної активності кадмієм для біосенсорів і флуоресцентної біосистеми.
- 36. При тривалому експонуванні спостерігали більш швидке інгібування, отримане за допомогою біосенсорів, ніж флуоресцентої біосистеми. Те ж
- 37. Показано, що за допомогою такої мультиферментної системи можна вивчати лужну фосфатазну активність Chlorella vulgaris та вплив
- 38. Мульти-ферментна електрохімічна система для експресної діагностики токсичних речовин Селективна мембрана – бутирил холінестераза, ацетилхолінестераза, уреаза Перетворювач
- 39. Відгук біосенсора на 10 мМ фосфатний буферний розчин (1), 1 % глюкози (2) та 0,1 %
- 40. Електронний ніс ГАЗ-1 Розпізнавання хімічних образів Масив сенсорів (8) являє собою набір кварцевих резонаторів, поверхя кожного
- 42. Скачать презентацию