Кампилобактериозы, иерсиниозы, листериозы

Первое сообщение о выделении кампилобактеров от людей больных ОКЗ появилось в отечественной литературе лишь в 1983 г., когда были описаны двое больных. В предыдущие годы в зарубежной печати появлялись сообщения о выделении кампилобактеров от больных с «диареями путешественников», возвратившихся из поездок по Советскому Союзу и заразившихся во время поездок. Так, A.Pönkä et al. С июля 1978 г. По июнь 1981 г. выявили кампилобактериоз у 63 человек из 524 заболевших ОКЗ, посещавших в качестве туристов СССР и заразившихся во время поездок. Случаи заболеваний КИ туристов, прибывших из СССР, отмечались и в других зарубежных. В настоящее время проблемами кампилобактериоза занимается большинство научно-исследовательских институтов эпидемиологического и микробиологического профиля.

Выделение кампилобактеров из объектов окружающей среды

Систематика бактерий рода Campilobacter
и их роль в инфекционной патологии человека
Первоначально кампилобактеры были отнесены к семейству Vibrionaceae но морфологически они значительно отличаются от вибрионов. В 1963 г. Был выделен новый род Campilobacter семейства Spirillaceae. Он включал в себя Vibrio fetus и родственные ему микроорганизмы . В соответствии с современной классификацией род Campilobacter состоит из двух десятков видов и подвидов бактерий, обнаруженных как у человека, так и животных и птиц. Перечень видов постоянно пополняется новыми, и систематика кампилобактеров, приведенная в последней редакции «Руководства по систематической бактериологии» уже является неполной. Поэтому для повседневной бактериологической практики более удобная рабочая классификация кампилобактеров.

Наиболее изучены и распространены C. jejuni, C. coli, C. laridis, C. fetus .
Первые три из них – термофилы (оптимальная температура их роста – 42 оС), они обычно являются этиологическими агентами диарейных заболеваний. Рядом исследователей доказана также роль термофильных кампилобактеров в возникновении септицемии, менингитов, тромбофлебитов, холециститов, поражения почек и мочевыводящих путей, сердца, легких, печени, нервной системы (полиневриты, парезы, параличи), опорно-двигательного аппарата (артриты, синовииты, бурситы и т.п.). Мезофильный вид кампилобактеров - C. fetus, культивируемый при умеренной температуре инкубации (25-37 оС), вызывает, в основном, септические и септико-пиемические формы КИ, в особенности у пожилых и ослабленных людей, страдающих различными хроническими заболеваниями, а также у лиц с иммунодефицитными.

Вместе с тем, в последние годы появляются сообщения о возрастающей значимости перечисленных видов кампилобактеров в инфекционной патологии человека. Одновременно отмечается интенсивная циркуляция ранее редко встречающихся видов среди животных и птиц и в ООС. Так, при обследовании персонала Алма-Атинской птицефабрики были выявлены случаи здорового носительства персоналом C. hyointestinalis, идентичных штаммам, выделенным от кур птицефабрики. Помимо этого, из вод открытых водоемов выделяются штаммы C. cryaerophila, что свидетельствует о массивном загрязнении этих вод отбросами животного происхождения.

По данным различных исследователей, C. jejuni обнаруживается в различных объектах значительно чаще, чем другие виды. Исключение составляют дикие птицы, у которых были обнаружены только C. coli и C. laridis. Штаммы C. laridis были обнаружены также у людей, больных КИ и из воды открытых водоемов, однако у кур данный вид кампилобактеров ни в одном случае обнаружен не был. Приблизительно каждый четвертый штамм ТК, выделенный от людей, принадлежал к виду C. coli. Его резервуаром оказались как домашние, так и экзотические животные и сельскохозяйственные птицы (куры, цесарки).

До недавнего времени в состав рода Campilobacter был включен вид C.pylori, ассоциирующийся с эрозивно-язвенными поражениями желудка и 12-перстной кишки. Изучение биологических свойств этого микроорганизма и его роли в патогенезе упомянутых процессов позволило существенно уточнить и пересмотреть существующие представления об этиопатогенезе гастритов и язвенной болезни. Однако тщательное изучение фено-и генотипических характеристик представителей C.pylori показало, что более оправданным является выделение их в отдельный род Helicobacter, в составе которого они и рассматриваются в настоящее время.

Возможно, в связи с выявлением ранее неизвестных биологических свойств у представителей рода Campilobacter, требующих выделения новых самостоятельных видов и подвидов бактерий, предстоят дополнительные изменения в систематике этого рода

Так, существует мнение о необходимости образования отдельного класса Proteobacteria и включении в него рода Campilobacter, Arcobacter, Helicobacter, Wolinella, Flexispira.
Для родов Campilobacter и Arcobacter, образующих генотипически и фенотипически отдельную группу предпочтительнее название Campilobacteriaceae.
Таким образом, род Campilobacter включает в себя довольно разнообразную группу бактерий, играющих весьма значительную роль в патологии человека и животных.

Экология и эпидемиология возбудителей
кампилобактериоза

Механизмы, пути и факторы передачи кампилобактариоза

Эпидемиологическая значимость
различных клинических форм кампилобактериоза у людей
Клинические признаки КИ не являются патогномоничными для данной инфекции, поэтому на основании одних симптомов практически невозможно отличить КИ от диарейных заболеваний, обусловленных другими энтеропатогенными микроорганизмами.
Основными симптомами КИ являются лихорадка, частый жидкий стул с примесью крови на 1-3 сутки болезни, боли в животе, которые появляются за 1 сутки до диареи и сохраняются 5-7 дней после нормализации стула. Выздоровление наступает через 7-12 дней, иногда наблюдаются рецидивы у детей через 2-3 недели, у взрослых рецидивы отмечаются исключительно редко.

Несомненно, что на клинические проявления КИ накладывает свой отпечаток и тот факт, что нередко кампилобактер выделяется от больного не как единственный этиологический агент, а в составе «микст-инфекции».
«Микст-инфекции», обусловленные кампилобактерами вместе с другими бактериальными, вирусными или протозойными патогенами, встречаются довольно часто, особенно в развивающихся странах. Так в Индии более чем в 60 % случаев кампилобактеры от больных ОКЗ выделяются в составе «микст-инфекции».

ЛЕЧЕНИЕ И ПРОФИЛАКТИКА
Анализ резистентности к антибиотикам штаммов кампилобактеров, выделенных при различных формах кампилобактериоза, показал, что штаммы, выделенные от бессимптомных носителей, отличаются высокой резистентностью к антибиотикам различных классов. Штаммы, выделенные от бессимптомных носителей, характеризовались высокой резистентностью к оксампу, амикацину и чувствительностью к эритромицину и ципрофлоксацину. Среди штаммов, выделенных от тяжелобольных кампилобактериозом, резистентные штаммы как правило не обнаруживаются.

ЛИСТЕРИОЗ

Актуальность листериоза
Листериоз и его возбудители интересуют не только инфекционистов, но и представителей различных биологических дисциплин. Этот интерес обусловлен двумя основными причинами. Первая экологическая особенность развития листерий, пластичность метаболизма, благодаря чему бактерии живут и размножаются в широком диапазоне природных условий. Вторая причина связана с изучением механизма клеточного иммунитета, так как листерии являются внутриклеточными паразитами, преимущественно локализующимися в Т-лимфоцитах.

Листериоз находится в центре внимания не только микробиологов, но и клиницистов различных специальностей.
Среди причин следует отметить:
- повсеместное распространение и растущую заболеваемость листериозом во всем мире;
- выраженный полиморфизм клинических проявлений и высокий процент летальных исходов;
- своеобразный патогенез листериозной инфекции;
- трудности в создании систем типирования с целью выявления и дифференциации эпидемиологически значимых опасных для человека штаммов L. monocytogenes.

Классификация и таксономия
С тех пор, как 1926 г. Муррел, Уэбба, Сэун составили подробное описание микроорганизма, названного ими Бактер «моноцитогенес», Д. Пири в 1927 г. описал его под названием Листерелла гепатолитика, взгляды на таксономию претерпели существенную эволюцию.
И хотя вопросы систематики и таксономии постоянно изучались как отечественными, так и зарубежными учеными, но вопросов было больше, чем ответов. До последнего времени неясным было понимание места листерий среди других микроорганизмов, а также внутри вида Listeria

В 7-м издании Руководства по систематике микроорганизмов Берджи род листерия помещен в семейство коринебактерий вместе с лактобактериями, родами бронхотрикс и эризипилотрикс. Последние способны вызывать рожу у свиней. И по мнению ряда исследователей (Г.Зеелигер, 1997; И.А.Бакулов, 1976, 1983, 1988; Д.Рокоурт, 1983, 1987) очень близки к листериям. В 8-м издании Берджи оба эти рода были вынесены из семейства коринебактерий и определены как роды с неясным систематическим положением семейства Lactobacillaceae. В 9-м издании определителя род Listeria отнесен к 19-й группе микроорганизмов – грамположительные не спорообразующие палочки правильной формы.

Открытие видовой специфичности нуклеотидного состава ДНК позволило использовать его в качестве одного из критериев установления геномного родства, а также для выяснения таксономического положения многих групп бактерий. Однако возможность применения этого метода в качестве единственного таксономического критерия весьма ограничена, так как ДНК двух биологически не родственных организмов могут иметь одинаковый молекулярный процент (гуанин-цитозина мол. % ГЦ). По мнению многих авторов, генеалогические связи прокариот могут быть установлены при использовании данных о последовательности нуклеотидов 16Sр РНК.

Исследования 16Sр РНК и анализ гомологии нуклеотидных последовательностей ДНК листерий и близких к ним микроорганизмов показали, что листерии филогенетически наиболее близки к факультативно аэробному роду Bronchotrix и к факультативно анаэробным родам Kurthia, Gemella и Eryspelothix. Это сходство значительно затрудняло постановку бактериологического диагноза. Вопрос внутривидовой систематики до последнего времени также оставался неясным. До 1961 г. род Listeria был представлен одним видом – L. monocytogenes. Затем в него вошли L. denitrificans (1961), L.grayi (1966), L. murrey (1971). Все штаммы серовара 5 обладали ярко выраженным гемолизом и были выделены болгарским исследователем Ивановым в 1975 г. в отдельный вид L. bulgarica. В 1984г. этот вид был переименован в L. ivanovi. Новый вид L. inocua объединил непатогенные штаммы L. monocytogenes, относившиеся к 6 серовару. В 1983 г. в род листерий вошли еще два вида: L. Welchimeri и L.seeligeri.

Общее количество видов достигло 8. Однако изучение гомологии нуклеотидных последовательностей НК и 16Sр РНК сократило количество видов листерий до 6.
В самостоятельный род Jonesia была выделена L. denitrificanes. Вид L. murray стали рассматривать как подвид L. Gray. Из шести известных в настоящее время видов листерий только L. monocytogenes патогенен для человека, а L. ivanovi – для животных.
Но диагностика листериоза в значительной мере затруднена из-за отсутствия быстрых и чувствительных методов идентификации патогенных листерий, чувствительных методов индикации патогенных и непатогенных штаммов листерий. В последние годы в диагностике и эпизоотологии, а также при исследовании патогенеза листериоза широко применяют современные методы молекулярной биологии и иммунологии.

Диагностика
Анализ плазмидного профиля является наиболее эффективным для быстрого получения ответа при исследовании листерий, содержащих набор плазмид.
Рестрикционный анализ хромосомной ДНК. Количество и размер фрагментов ДНК отражает частоту и распределение сайтов рестрикции и часто используется для анализа генома листерий. В последнее время широко применяют гель-электрофорез хромосомальной ДНК в пульсирующем электрическом поле, который имеет более высокую разрешающую способность, чем обычные методы.

Саузерен-блоттинг хромосомной ДНК. Для анализа хромосомной ДНК используют меченые ДНК-зонды, комплементарные различным последовательностям ДНК листерий.
Риботипирование позволяет с помощью блот-гибридизации обнаружить полиморфизм рибосомальных оперонов различных видов листерий.
Полимеразная цепная реакция (ПЦР) оказалась особенно полезной для обнаружения и дифференциации патогенных листерий. Основное преимущество ПЦР - это высокая чувствительность и быстрота получения результата. Для проведения филогенетического анализа и изучения эволюции патогенных листерий используется несколько различных вариантов ПЦР.

Секвенирование. В настоящее время стало технически возможным сравнивать многочисленные изоляты патогенных и непатогенных листерий секвенированием сходных локусов каждого из них. Этот подход уже широко используется в исследованиях по эволюции, в анализе естественных изменений и разновидностей внутри рода листерий и обеспечивает высоконадежные и объективные данные при проведении эпизоотологических исследований.
Данные методы ни в коей мере не исключают классические методы диагностики, а дополняют их для постановки быстрого и точного диагноза.

Основой любой системы типирования является тот факт, что эпизоотологически связанные изоляты листерий происходят от одного предшественника, следовательно, имеют общие характеристики, которые позволяют отличать их от других полевых изолятов. Поэтому использование специфических характеристик для типирования патогенных штаммов и изолятов листерий прежде всего связано с их внутриштаммовой стабильностью и их многообразием внутри вида. Последний является отражением генетической эволюции, являются результатом точечных нелетальных мутаций, которые накапливаются в течение определенного времени. Такие мутации могут быть выявлены, если они встречаются на участках генома, кодирующих метаболические ферменты, участвующих в регуляции синтеза ДНК, а также белков, определяющих патогенность листерий.

Биологические свойства
Биологические свойства возбудителей листериоза имеют черты сходства с другими видами рода Listeria, и в то же время отличаются от свойств других представителей этого рода.
Для листерий характерен ряд температурозависимых признаков, которые по-разному проявляют ся при температуре от +4 до 37оС. Есть мнение, что эти свойства могут быть следствием адаптации микроорганизма к разным местам обитания: организму теплокровных и внешней среде.

Морфология и культурные свойства
Микроорганизмы рода Listeria представляют собой грамположительные короткие палочки с закругленными концами, иногда почти кокки, одиночные или в коротких цепочках (0,4-0,5 х 0,5-2 мкм). Листерии ферментируют глюкозу, каталазоположительны, оксидоотрицательны, образуют цитохромы. Оптимальная температура роста 30-37оС, хотя листерия – психрофильный микроорганизм, может расти и при 4оС. При 20-25оС листерии подвижны за счет образования перитрихиальных жгутиков, при 37оС жгутики как правило не образуются, и листерии не подвижны. Листерии не образуют споры и капсулы, факультативные анаэробы, хемоорганотрофы, не устойчивы к кислотам.

Выделение возбудителя из клинического материала и продуктов питания оказалось малоэффективным без селективных компонентов и методов. Поэтому в 80-е годы были созданы селективные среды, значительно повышающие эффективность выделения и сократившие сроки идентификации L. monocytogenes..

Принципиальное значение имеет применение в качестве селективного фактора сочетание эскулина и цитрата железистого аммония. Эскулин играет роль единственного источника углерода, а цитрат железистого аммония выступает в качестве индикатора гидролиза углеводов, что позволяет с высокой степенью достоверностидифференцировать L. monocynjgenes от другой микрофлоры. Цвет среды в результате реакции продуктов гидролиза эскулина с цитратом железистого аммония меняется, что приводит к потемнению бульона или образованию черного ореола вокруг выросших колоний листерий на Оксфордском агаре и Палкам агаре.

Рост листерий на различных питательных средах

Факторы патогенности L. monocytogenes

В соответствии с Международной классификацией болезни
(МКБ-10) у листериоза имеются следующие формы:
А32 – листериоз;
А32.0 – листериоз кожи;
А32.1 – листериозный менингит и менингоэнцефалит;
А32.7 – листериозная септицемия;
А32.8 – другие формы листериоза;
А32.9 – листероз неуточненный;
А37.2 - неонатальный (диссеменированный) листериоз.

Лечение
Большинство исследователей
отмечают, что штаммы L.monocytogenes
проявляют in vitro чувствительность
к хинолонам и фторхинолонам,
антисинегнойным пенициллинам,
цефалоспоринам
III-IV поклления, аминогликозидам,
хлорамфениколу, карбапенемам,
ко-тримоксазолу.
В то же время данный микроорганизм устойчив или недостаточно чувствителен к таким препаратам, как бензилпенициллин, пиперациллины,
цефалопорины I поколения.
Лечение инфекции, вызванной L.monocytogenes, должно проводиться с учетом формы и характера течения заболевания, принадлежности заболевшего к группе риска развития осложнений и, естественно, чувствительности возбудителя к антибактериальным препаратам.
Выбор препаратов производится не только с учетом данных по чувствительности возбудителя in vitro, но и его преимущественно внутриклеточной локализации в тканях.

Профилактика
Эффективные меры специфической профилактики для людей отсутствуют, а неспецифическая профилактика заключается в соблюдении санитарно-ветеринарных правил и санитарно-противоэпидемических мер по чувствительности возбудителя in vitro, но и его преимущественно внутриклеточной локализации в тканях.

Классификация
СЕМЕЙСТВО: ENTROBACTERIACEAE
РОД: YERSINIA
ВИД:
Y.pestis
Y. enterocolitica
Y.pstudotuberculosis
Y. kristensenii
Y. intermedia
Y.frederikseni

МОРФОЛОГИЯ И КУЛЬТУРАЛЬНЫЕ СВОЙСТВА
Иерсинии – полиморфные палочки с закругленными концами. Все виды подвижны, кроме Y.pestis – возбудителя чумы. Подвижность выражена после выращивания при t ниже 30°С; при t 37°С иерсинии не подвижны. Размер и полиморфизм зависит от возраста культуры, температуры и питательных сред для выращивания.Некоторые виды могут продуцировать капсульное вещество, а Y.pestis образует капсулу. При низких температурах капсульного вещества образуется больше. Температура оптимума роста иерсиний составляет 20 – 30 °С; нижняя граница - 0-2°С , верхняя граница - 39°С; оптимум рН - 5,8 –9,6. Рост бактерий при t 10 - 12°С сопровождается замедлением лаг – фазы, что позволяет применять низкотемпературное культивирование (при 4°С).

Иерсинии не отличаются биохимической инертностью.
У Y. Enterocolitica выделяют соматический О-, жгутиковый Н – и Ar вирулентности (Vi - Ar и W - Ar), расположенный на наружной мембране. Бактерии серогруппы О 10 имеют фимбрильный Ar, обозначаемый как К1. Традиционно серотипирование Ar Y. Enterocolitica осуществляется по общей схеме