Правила взятия периферической крови

ЭТАПЫ ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ
Взятие, доставка, прием и регистрация крови
Приготовление аналитических проб из доставленных образцов
Подготовка оборудования
Выполнение исследования
Оценка результата исследования
Оценка правильности исследования (контроль качества)
Регистрация заключений
Дезинфекция биоматериала и лабораторного инвентаря (расходных материалов, посуды)

ПОДГОТОВКА РАБОЧЕГО МЕСТА ДЛЯ ВЗЯТИЯ КРОВИ ИЗ ПАЛЬЦА
СИЗ – шапочка, маска, перчатки, очки, фартук
«Чистая зона» – стерильный материал (капилляры, груши, скарификаторы, спиртовые и сухие шарики)
«Грязная зона» - контейнеры для дезинфекции использованных капилляров и груш, емкости для утилизации отработанных перчаток, скарификаторов, ватных шариков)

Подготовка пациента
Кровь берут из вены, пальца, мочки уха, у новорожденных из пяточки
Утром (7:00 – 9:00)
Натощак (10 – 12 ч голодания)
Воздержаться от алкоголя, курения, физических нагрузок и лечебных процедур
До приема лекарственных средств
В положении сидя или лежа

Правила взятия крови из пальца
Обработать кожу пальца 70% этиловым спиртом
Сделать прокол боковой поверхности мякоти безымянного пальца скарификатором
Удалить первую каплю сухим стерильным тампоном
Собрать свободно вытекающую кровь в капилляр или пробирку
Закрыть место прокола спиртовым тампоном

Работа с пробиркой типа Miсrovette

Место венепункции обработать 70% раствором этилового спирта
Наложить жгут не более чем на 1 – 2 мин
Кровь для гематологических исследований берется во вторую или третью очередь

Подготовка цельной пробы крови к исследования
Хранение: венозная кровь до 24 ч при +4 + 8°С
Капиллярная кровь – до 4 ч при +18+25°С
Нельзя замораживать!
Через 8 ч после взятия снижается объем лейкоцитов, повышается объем эритроцитов
Оптимальное время исследования крови 1 – 4 ч после взятия (5 – 30 мин – временная агрегация тромбоцитов)
Перед исследованием пробы согреть до комнатной температуры и тщательно перемешать
Приготовление мазков крови – не позднее 1 – 2 ч после взятия крови

Подготовка предметных стекол
для гематологических мазков
Толщина стекла – 1 мм
Стекла промыть щеткой в мыльно-содовом растворе
Прополоскать в проточной воде, затем в дистиллированной, высушить
Поместить в смесь Никифорова на 30 – 60 мин.
Вынуть пинцетом, насухо протереть
Хранить в закрытой емкости

Приготовление мазков крови
Поместить каплю крови на расстоянии от узкого края стекла на 1 – 2 см
Поместить шпатель под углом 30 – 45°, сделать мазок
Длина мазка – 3 – 4 см (1/2 – 3/4 длины стекла)
Мазок тонкий, желтоватого цвета, оканчивается метелочкой
Высушить на воздухе, промаркировать

Приготовление мазков крови с помощью полуавтоматического устройства для приготовления гематологических мазков
Hemaprep
Устройство позволяет готовить мазки для рутинного анализа и для специальных методов исследования
Портативность устройства обеспечивает удобство применения в лаборатории и в клиническом отделении
Изменяя скорость приготовления мазка, можно регулировать длину мазка

Фиксация и окраска мазков крови
Смесь Никифорова – 30 мин
96% раствор этилена – 30 мин
Абсолютный метилен – 3 – 5 мин
Раствор Май-Грюнвальда – 3 – 5 мин

Принцип окраски препаратов крови
Тропизм составных частей клетки к анилиновым красителям
Основные краски – метиленовый синий, его производные – азур I (метиленовый азуровый) и азур II (смесь азура I и метиленового синего)
Кислые краски – желтый водорастворимый эозин
Нуклеиновые кислоты ядра (кислые структуры) + основные красители = базофилия
Белки цитоплазмы (щелочные структуры) + кислые красители = оксифилия
Воспринимают оба красителя = метахромазия

Окраска по Нохту
Краситель: азур II-эозин –
1 мл 0,1 % азура II + 0,5 мл 0,1 % эозина + 6 мл фосфатного буфера (рН 7,4 – 7,5)
На мазок налить 3 – 4 мл рабочего красителя
Окрашивать 20 – 45 мин (время установить опытным путем)
Промыть проточной водой
Высушить на воздухе

Окраска по Романовскому-Гимза
Рабочий краситель: 1 мл концентрата Романовского-Гимза + 1 мл дистиллированной воды
На мазок налить 3 – 4 мл рабочего красителя
Окрашивать 20 – 45 мин (время установить опытным путем)
Промыть проточной водой
Высушить на воздухе

Окраска по Паппенгейму
На мазок налить 3 – 4 капли фиксатора Май-Грюнвальда на 3 – 5 мин
Добавить равный объем дистиллированной воды на 1 мин
Смыть фиксатор проточной водой
Докрасить азуром II-эозином (по Нохту)
Окрашивать 8 – 15 мин (время установить опытным путем)
Промыть проточной водой
Высушить на воздухе

СанПиН 2.1.3.2630-10 "Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность"

Химическая дезинфекция
Объекты – скарификаторы, ланцеты, наконечники к дозаторам, ватно-марлевые тампоны, контейнеры, пробирки и т.д.
Основные дезинфектанты:
Средства на основе хлора. Широкий антимикробный спектр действия. Вызывают коррозию металлических поверхностей, обесцвечивание тканей
Септолит, Ника-Хлор, Ока-Таб, Акватабс, Део-Хлор
Перекись водорода, надкислоты. Не имеют запаха, легко разлагаются. Наиболее безопасны для окружающей среды, малотоксичные. Используют для дезинфекции стойких к коррозии металлов, стекла, пластмасс.
Пероксимед, Фармадез, Аламинол, Самаровка

Дезинфекция и предстерилизация лабораторной посуды
Пробирки, цилиндры, колбы, штативы, капилляры, груши и др.
Объекты погрузить в контейнер с дезраствором полностью
Время экспозиции – 30 – 120 мин (инструкция к дезсредству)
Промыть проточной водой
Погрузить в дистиллированную воду на 10 – 15 минут
Ополоснуть дистиллированной водой
Сушить в суховоздушном шкафу
Капилляры и груши далее стерилизуются
Качество проведения предстерилизации проводят азопирамовой пробой (остатки крови)

Утилизация
Биологический материал и расходный материал, имеющий контакт с кровью –
отходы класса Б
Скарификаторы, наконечники утилизируются в непрокалываемые емкости
СИЗ, ватно-марлевые томпоны утилизируются в желтые мешки
Емкости заполняются на 3/4 объема, герметично закрываются и транспортируются в место временного хранения в желтых контейнерах
САНИТАРНО-ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКИЕ ТРЕБОВАНИЯ К ОБРАЩЕНИЮ С МЕДИЦИНСКИМИ ОТХОДАМИ Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы СанПиН 2.1.7.2790-10.

Алгоритм действий при аварийной ситуации
- в случае порезов и уколов немедленно снять перчатки, вымыть руки с мылом под проточной водой, обработать руки 70%-м спиртом, смазать ранку 5%-м спиртовым раствором йода;
- при попадании крови или других биологических жидкостей на кожные покровы это место обрабатывают 70%-м спиртом, обмывают водой с мылом и повторно обрабатывают 70%-м спиртом;
- при попадании крови и других биологических жидкостей пациента на слизистую глаз, носа и рта: ротовую полость промыть большим количеством воды и прополоскать 70% раствором этилового спирта, слизистую оболочку носа и глаза обильно промывают водой (не тереть);
- при попадании крови и других биологических жидкостей пациента на халат, одежду: снять рабочую одежду и погрузить в дезинфицирующий раствор или в бикс (бак) для автоклавирования;
- как можно быстрее начать прием антиретровирусных препаратов в целях постконтактной профилактики заражения ВИЧ.
Профилактика ВИЧ-инфекции. Санитарно-эпидемиологические правила СП 3.1.5.2826-10.

СОСТАВ АПТЕЧКИ АНТИ СПИД (ЭКСТРЕННОЙ ПРОФИЛАКТИКИ ПАРЕНТЕРАЛЬНЫХ ИНФЕКЦИЙ)
Аптечка экстренной профилактики парентеральных инфекций – (Анти ВИЧ, гепатит и т.д.) согласно приказу №1н Минздрав РФ от 09.01.2018:
раствор йода 5% - 1 шт.
спирт медицинский (раствор этанола) 70%
бинт стерильный марлевый 5Х10 см — 2шт.
лейкопластырь бакт. 1.9 Х 7.2 — 3шт.
салфетка марлевая медицинская стерильная (16 см х 14 см) 10 шт.

Найдите верные соответствия
Стерильные скарификаторы
Использованные наконечники
Стерильные тампоны
Использованные тампоны
Емкости для дезинфекции
Емкости для отходов класса Б
Стерильные капилляры
Использованные груши